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WB实验原理及FAQ

868 人阅读发布时间:2022-08-25 18:55



一、Western Blot实验原理是什么?

Western Blot即蛋白质印迹法,又称immunoblotting,是定性、定量检测蛋白表达的常用技术方法之一。WB是一种把电泳分离的组分从凝胶转移到一种固相载体NC膜或PVDF,并以针对特定氨基酸序列的特异性试剂作为探针检测。WB采用抗体作为探针,抗体可以与附着在固相支持物的靶蛋白的抗原表位发生抗原-抗体免疫反应。这种技术的作用是对细胞或组织提取的蛋白混合物即总蛋白混合物中的某一特异蛋白进行鉴别和半定量分析,旨在鉴别特异性蛋白的类型如亚型、聚体、剪切体等和蛋白表达量的变化。

二、Western Blot实验步骤是什么?

SDS-PAGE步骤完成后,进行Western Blot操作,具体实验步骤描述如下。
 
步骤名称 主要操作
实验准备 剪刀、镊子硝酸纤维素NC膜滤纸、冰袋、一盆冰、白黑夹子、海绵
一个与胶块般大小的NC膜,同样,剪同样大小的4滤纸。按照黑板一海绵一2层滤一胶块一NC膜一二层滤海绵一白板。双手捏住黑白夹子两侧将其夹紧,以上在转膜液中操作。
转膜 将夹子、外装配好。电泳仪没置: 300mA。根据目的蛋白的大小来决定转膜时间。蛋白小时间就30min左右,蛋白大时间就得相应增加。
封闭 转后的NC/PVDF膜拿出后,在TBST中洗一洗。
配制封闭2.5g脱脂奶粉+50ml TBST,摇均匀。将NC膜转到含有封闭液的10cm玻璃皿中,室温,80rpm 2h
孵育一抗 将封闭液回收,加入一抗稀释液。4℃ 慢摇2h或者过夜。一抗的稀释:按照1/1000或者1/2000
洗涤 TBST洗涤3次,一次15min
孵育二抗 回收一抗稀释液,加入二抗稀释液。室温,慢摇2h
洗涤 TBST洗涤3次,一次15min
显色 准备:将显色仪提前0.5h打开,准备纸巾、镊子、ECLAB1.5ml离心管。
将显色液AB按照1:1混合。一般配制1ml足够。
用镊子从TBST中取出膜,在黑板上,一侧先触底,缓缓放下。滴加AB混合液,均匀滴在膜表面。
显色仓中有两层:上层显示“内参与靶条带”,下层显示Marker,Marker需用‘cutom’中的protocol显色。
图像:“TIF”和“JPG”两种格式各一张。
膜再生 倒入膜再生液,室温,80rpm30 min
洗涤 用TBST3次,每次10min。
封闭 TBST倒出,倒入封闭液,室温,80rpm,2h
孵育一抗 加入一抗稀释液。4℃,慢摇过夜。到时回收一抗稀释液。
洗涤 用TBST3次,每次10min。
孵育二抗 加入二抗稀释液,室温,慢摇,2h。到时回收。
洗涤 用TBST3次,每次10min。
显色 步骤详见上面显色描述。

三、Western Blot实验中可能出现的问题及对策:

目前,Western Blot因其便捷的优点,加之电泳及电转设备、抗体和信号检测系统的成熟商品化,多种技术不断进步共同提高了检测的灵敏度,使得Western blot技术成为几乎每一个进行蛋白质研究的实验室至关重要的实验之一。在一般的实验室中都能够进行Western blot技术操作,但在实验过程中也会经常遇到各种问题。
 
实验问题 可能原因 推荐办法


1.目的条带未显现
目的蛋白的表达量过低 提高上样量,浓缩目的蛋白,采用更高灵敏度的试剂盒
使用抗体
效价不足
使用新配制的一抗,避免反复冻融;增加一抗或者二抗浓度,适当延长孵育时间
转膜效率低 选择合适的转膜方式,提高转膜效率(根据蛋白分子量大小调整转膜时间)
2.非平行、弯曲条带 电泳迁移速度过快或迁移温度过高 调整电泳设置如PH值、电压等,电泳时降低环境温度(用冰盒包围住电泳槽)。

3.背景过高
封闭条件不合适 延长封闭时间或更换封闭剂
抗体浓度过高 降低一抗/二抗浓度并延长
孵育时间
抗体与封闭剂
发生交叉反应
加温和去污剂如Tween20
4.条带糊 抗体特异性不强 使用更特异更优的抗体
膜洗涤不完全 调整洗涤摇床转速、时间,配制新鲜洗涤液
电泳仪、转膜液使用次数太多 按照溶液配制标准配制全新的电泳液、转膜液
5.显色不美观 曝光时间过长 显色时根据经验选择曝光时间,可以多试几次,时间由少到多
操作过程中手碰到了膜 操作小心,全程用镊子抓取,避免任何别的形势的触碰
 

卡梅德生物拥有成熟的四大核心技术服务平台:
1稳定细胞系筛选与基础分子生物学平台
2抗体工程技术平台
3蛋白服务平台
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我们成功研发了众多用于科学研究以及新药发现的重组蛋白、抗体、抗体药物靶点蛋白、工业酶、诊断原料等相关试剂,竭诚为您提供服务。


 

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